Übung Labormethoden

Praktikum in vier Parallelen (02.+03.03.27 bzw. 04.+05.03.27, jeweils entweder 9:00-12:30 Uhr oder 14:00-17:30 Uhr)

Link zu den Versuchsergebnissen

Kursskript

Anmeldung in Moodle (02.02.27–12.02.27)
Einschreibeschlüssel: "MolZell"

Alle Informationen zu den Klausuren im Modul
Methoden der Molekular- und Zellbiologie finden sich auf der
Übersichtsseite.

 

Die Übung Labormethoden ist ein Vorpraktikum für die Übungen Methoden der Molekularbiologie und Methoden der Zellbiologie. Dieser Kurs macht mit den wichtigsten molekular- und zellbiologischen Techniken vertraut und vermittelt Wissen zur Durchführung von Experimenten anhand von Versuchsvorschriften und zur Auswertung dieser Experimente. Informationen zur Anmeldung finden sich im Kurskatalog des Lehrstuhls Genetik.

Zur Übung Labormethoden gibt es einen verpflichtenden Online-Vorbereitungskurs (auf Moodle, wird am 15.02.27 freigeschaltet; Einschreibeschlüssel: VKLabormethoden) mit theoretischen Einführungen in gängige Labor-Techniken, die in späteren Übungen praktisch angewendet werden. Zusätzlich findet in diesem Online-Vorbereitungskurs die Sicherheitsbelehrung für die Übung Labormethoden statt. Nach Abschluss des Online-Vorbereitungskurses gibt es ein Zertifikat als Bestätigung der erfolgreichen Teilnahme.

Die erfolgreiche Teilnahme am Online-Vorbereitungskurs ist Voraussetzung für die Teilnahme an der Übung Labormethoden. Deswegen unbedingt das Teilnahmezertifikat entweder ausgedruckt oder digital zum Kurs mitbringen! Ohne Zertifikat keine Teilnahme!
Die Teilnahme an der Übung Labormethoden ist wiederum die Voraussetzung zur Teilnahme an den Übungen Methoden der Molekularbiologie und Methoden der Zellbiologie.

Thematisch dreht sich in diesem Kurs alles um die Bäckerhefe Saccharomyces cerevisiae, das am besten untersuchte Modellsystem für einfache, einzellige Eukaryoten. Wir verwenden dazu gängige Backhefe aus dem Supermarkt. Es werden folgende Techniken eingeführt:

  • die korrekte Bedienung von Glas- und Mikroliterpipetten
  • die korrekte Bedienung von Feinwaagen
  • die korrekte Bedienung von Lichtmikroskopen
  • die Bestimmung von Zellzahlen mittels einer Zählkammer
  • die Isolierung von Proteinen aus Zellen
  • die Analyse von Proteinen mittels Polyacrylamid-Gelelektrophorese
  • die photometrische Bestimmung von Protein-Konzentrationen
  • die Isolierung von DNA aus Zellen
  • die Analyse von DNA mittels Agarose-Gelelektrophorese
  • die Bestimmung von DNA-Konzentrationen durch Abschätzung auf einem Agarosegel
  • die vergleichende Auswertung der Einzelergebnisse in Bezug auf den gesamten Kurs

Das Kursskript ist bewusst ausführlich gehalten, damit die Kurstage individuell gut vorbereitet werden können. Für jeden Versuch sind der fachliche Hintergrund, die verwendeten Materialien und die Versuchsdurchführung detailliert angegeben. Daran anschließend gibt es jeweils Platz für die Versuchsergebnisse und deren Auswertung. Für den persönlichen Lernerfolg in diesem Kurs und für das Bestehen des Online-Vorbereitungskurses ist es wichtig, das Kursskript vorher genau durchzulesen!

Der Kurs findet als halbtägiges Blockpraktikum an zwei aufeinanderfolgenden Tagen (0,5 SWS) in 4 Kursparallelen statt.
Kurs 1: 02.03.27 & 03.03.27, 09:00–12:30 Uhr
Kurs 2: 02.03.27 & 03.03.27, 14:00–17:30 Uhr
Kurs 3: 04.03.27 & 05.03.27, 09:00–12:30 Uhr
Kurs 4: 04.03.27 & 05.03.27, 14:00–17:30 Uhr
Für die Gruppen 1–18 findet der Kurs in Raum F00.045, für die Gruppen 19–30 in Raum C00.021, und für die Gruppen 31–42 in Raum C00.015 statt (siehe Raumplan des Biozentrums).

Wichtige Informationen

  • Bitte folgende Materialien zum ersten Kurstag mitbringen:
    - Laborkittel
    - Edding fein (für Petrischalen und Reaktionsgefäße)
  • Alle Fragen bitte an Andreas Brachmann richten. Bitte beachten, dass Auskünfte zum Studium nur an CampusLMU-Emailadressen versendet werden, da nur so die Identität verifiziert werden kann. Aus diesem Grund Anfragen bitte immer von der CampusLMU-Adresse aus senden.

Zusatzliteratur über Labortechniken

Reinard: "Molekularbiologische Methoden 2.0", UTB-Verlag 2021
In diesem Buch sind alle wichtigen molekularbiologischen Techniken leicht verständlich beschrieben. Die 1. Auflage dieses Buchs ist online in der Uni-Bibliothek erhältlich. Die Anschaffung der 2. Auflage lohnt sich aber für alle, die später einmal in einem molekularbiologischen Labor selbständig arbeiten wollen.

User Guide for Pipetman P
Bedienungsanleitung für Mikroliterpipetten (Firma Gilson, auf Englisch)

Get Better Results: Your Quick Guide to Good Pipetting
Pipettierhandbuch (Firma Mettler-Toledo, auf Englisch)

Essential Measurement Techniques: A Guide for Measurement Quality in the Lab
Handbuch mit nützlichen Informationen zu einer Reihe von Labortechniken (Firma Mettler-Toledo, auf Englisch)

Kontakt

NameEmailTelefon
Andreas Brachmann brachmann@lmu.de 089-2180.74703

Bitte beachten, dass Auskünfte zum Studium nur an CampusLMU-Emailadressen versendet werden, da nur so die Identität verifiziert werden kann. Aus diesem Grund Anfragen bitte immer von der CampusLMU-Adresse aus senden.